规格 磁珠法植物基因组DNA提取试剂盒 G3621-50T 50T 产品简介 本试剂盒利用专为核酸提取和纯化开发的超顺磁性磁珠并搭配特别优化的裂解缓冲体系可以安全、快速、高效地从50-100 mg简单植物组织样本（如小麦、玉米叶片等）中提取高纯度基因组DNA。植物组织经裂解液裂解后能够快速释放基因组DNA，并有效去除样本中除核酸外的杂质。本试剂盒无需苯酚、氯仿等有机试剂，无需多步离心。提取得到的基因组DNA可用于后续的PCR反应、酶切反应、Southern杂交以及RAPD、AFLP、RFLP等多种常规分子生物学实验。 储存与运输 RNase A冰袋（wet ice）运输，-20℃保存；其余试剂室温运输，室温储存；有效期12个月。 组成 Component Number Component G3621- 50 T G3621-1 Buffer PGL1 30 mL G3621-2 Buffer PGL2 5 mL G3621-3 Buffer GB 30 mL G3621-4 Buffer GD 16 mL（使用前加入24 mL无水乙醇） G3621-5 Buffer PW 24 mL（使用前加入56 mL无水乙醇） G3621-6 SweMag Beads 2×1 mL G3621-7 RNase A 1 mL G3621-8 Buffer TE 10 mL 说明书 1份 使用前须知（请仔细阅读） 1. Buffer PGL1如有沉淀现象，请于65℃加热溶解，待恢复至室温后使用。 2. 使用前请向Buffer GD中加入24 mL无水乙醇，向Buffer PW中加入56 mL无水乙醇，混匀后使用。 3. 自备磁力架。 操作步骤 1. 植物组织样本裂解： a. 裂解液＋研磨仪研磨裂解： 提前向2.0 mL Nuclease-free研磨管（ 推荐HT-200-M ）中加入500 μL Buffer PGL1，再加入3-4颗4 mm的研磨钢珠（推荐 G0104-200G ），取新鲜或超低温冻存的植物组织50-100 mg（叶片样本剪碎至0.5 cm 2 ，根和茎剪碎至米粒大小），迅速转移至研磨管中，将研磨管置于研磨仪（推荐 SWE-3D ）中进行研磨（推荐研磨程序：频率70HZ，每次30 s，研磨15-20次，每次间隔5 s，如果是比较难研磨的样本，可以将研磨次数增加至30次或者更多），直至研磨成匀浆状 （如果组织没有被彻底匀浆，会影响DNA的得率和质量） 。待充分研磨后，加入20 μL RNase A，颠倒混匀，65℃孵育15 min，每隔5 min颠倒混匀一次。 b. 液氮＋研磨仪研磨裂解： 取新鲜或超低温冻存的植物组织50-100 mg（叶片样本剪碎至0.5 cm 2 ，根和茎剪碎至米粒大小），迅速转移到装有3-4颗3 mm的研磨氧化锆珠（推荐 G0203-150G ）并用液氮预冷的2.0 mL Nuclease-free研磨管（ 推荐HT-200-M ）中，将研磨管置于研磨仪（推荐 SWE-3D ）中 （放置研磨管前将 研磨仪 适配器于液氮中迅速预冷） 进行研磨，直至研磨成粉末状 （如果组织没有被完全研磨成粉末状，会影响DNA的得率和质量） 。加入500 μL Buffer PGL1混匀，再加入20 μL RNase A，颠倒混匀，65℃水浴15 min，每隔5 min颠倒混匀一次。 c. 液氮＋研钵研磨裂解： 取新鲜或超低温冻存的植物组织50-100 mg（叶片样本剪碎至0.5 cm 2 ，根和茎剪碎至米粒大小），迅速转移到用液氮预冷的研钵中，加入液氮，用研磨杵研磨组织，其间不断加入液氮，直至研磨成粉末状 （如果样本没有完全研磨成粉末状，会影响DNA的得率和质量） 。将研磨成粉末的样本加入到含有500 μL Buffer PGL1的1.5 mL Nuclease-free离心管中混匀，再加入20 μL RNase A，颠倒混匀，65℃水浴15 min，每隔5 min颠倒混匀一次。 d. 液氮＋研杵棒研磨裂解： 取新鲜或超低温冻存的植物组织50-100 mg（叶片样本剪碎至0.5 cm 2 ，根和茎剪碎至米粒大小），迅速转移到用液氮预冷的1.5 mL Nuclease-free离心管中，加入液氮，用一次性研杵棒研磨组织，其间不断加入液氮，直至研磨成粉末状 （如果样本没有完全研磨成粉末状，会影响DNA的得率和质量） 。然后向离心管中加入500 μL Buffer PGL1混匀，再加入20 μL RNase A，颠倒混匀，65℃水浴15 min，每隔5 min颠倒混匀一次。 2. 向离心管中加入100 μL Buffer PGL2，充分颠倒混匀，冰上放置5 min； 3. 12,000 rpm，4℃离心5 min，将上清转移至一新的2.0 mL离心管中 （如果取得的上清中仍存在有漂浮物，需要再次 12,000 rpm，4℃离心5 min，将上清转移至另一新的2.0 m L 离心管中） ； 4. 向第3步中加入与上清等体积Buffer GB，充分上下颠倒混匀； 5. 加入与上一步的混合液等体积的异丙醇，充分上下颠倒混匀。再加入40 μL SweMag Beads （SweMag Beads使用前需分散均匀） ，使用移液器吹打或涡旋振荡混匀； 6. 室温静置10 min，放置过程中，使用移液器吹打或涡旋振荡混匀数次，保持磁珠处于悬浮状态； 7. 将离心管移至磁力架上静置30 s （ 如果第5步的混合液体积超过2 mL，将混合液分批次转移至2 mL离心管中进行吸磁，或者使用更大规格的磁力架 ） ，待上清清澈后，吸弃上清； 8. 加入600 μL Buffer GD，移开磁力架，使用移液器吹打或涡旋振荡至磁珠分散均匀，将离心管移至磁力架上静置30 s，待上清清澈后，吸弃上清； 9. 加入700 μL Buffer PW，移开磁力架，使用移液器吹打或涡旋振荡至磁珠分散均匀，将离心管移至磁力架上静置30 s，待上清清澈后，吸弃上清； 10. 重复步骤9； 11. 将离心管盖打开，室温放置5-10 min，使乙醇完全挥发 （ 避免 磁珠过度干燥，以免影响核酸得率） ； 12. 移去磁力架，向离心管中加入80-100 μL Buffer TE或Nuclease-free Water，使用移液器轻轻吹打或涡旋振荡至磁珠分散均匀，室温静置5 min； 13. 将离心管置于磁力架上，直至磁珠完全吸附，吸取上清至一新的1.5 mL Nuclease-free离心管中，即得高纯度的基因组DNA。 注意事项 1. 操作之前，请务必认真阅读本产品说明书。 2. 超低温冻存的植物样本避免反复冻融，否则会影响基因组DNA质量与产量。 3. 对于核酸含量较多的植物组织，可将样本起始量减少一半；对于核酸含量少的样本，可将样本起始量增加两倍。 4. 磁珠悬液在保存过程中应避免冷冻；磁珠易沉降，使用前应充分振荡使其保持均匀悬浮状态。 5. 向样本中加入磁珠前，需要将样本中的试剂充分混合均匀。 6. 洗脱DNA前应使乙醇完全挥发，避免残留的乙醇影响下游实验。 7. 请勿长时间干燥磁珠，以免影响基因组D...