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蛋白提取

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实验步骤

1.组织总蛋白提取

准备好所需要数量的研磨管(HT-200-M),加入研磨珠(SYM-03Z),置于冰盒上备用;

Tips:研磨管较普通离心管,管壁进行了加厚处理,不易破损;采用加珠器,无需夹取,使用中全程洁净,减少蛋白降解风险。


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组织块先用预冷 PBS(G4202-500ML)洗涤 2-3 次,除去血污,然后放在滤纸上,吸尽多余的 PBS 后放入对应的研磨管中,加入大约 10 倍样本体积的完全裂解液(表1),置于研磨仪(SWE-3D)中,对称放置,确认放置平衡后,盖好盖子,选择程序开始研磨。

表1:完全裂解液组分

名称 作用 货号 规格
RIPA裂解液(强) 快速裂解细胞及组织 G2002-30ML             30 mL
G2002-100ML             100 mL
50×Cocktail蛋白酶抑制剂 抑制各种蛋白酶活性,避免蛋白降解 G2006-250UL             250 μL
磷酸化蛋白酶抑制剂 抑制磷酸化蛋白酶 G2007-1ML             1 mL
PMSF(100mM) 避免蛋白降解 G2008-1ML             1 mL



Tips:完全裂解液能确保从样本中提取蛋白的量和状态。建议提取过程保持低温环境,研磨时采用冷冻研磨仪,减少蛋白质降解和变性。

2. 悬浮细胞蛋白提取

将细胞连带培养基一起吸入 15 mL 离心管(EP-1501-J)中,使用高速低温离心机(SLX-1024F),4℃,2000rpm,离心 5分钟,去掉上清;

Tips:SLX-1024F内仓具有温度传感器,能实时监控温度,使温度保持在设定值,有效避免样本变性和降解。

加入 1mL PBS 溶液(G4202-500ML)重悬细胞,将细胞转移到 1.5mL 离心管(EP-150X-J)中,然后 4℃,2000 rpm,离心 5分钟,去掉上清,保留沉淀,重复此步骤 2-3 次(此步骤目的为清洗细胞中残留的培养基);

根据细胞沉淀的量加入适量的完全裂解液(表1),例如沉淀体积为绿豆大小(大概 10uL 左右)的加入大约 200μL 完全裂解液,加入适量研磨珠,放入研磨仪进行裂解;

裂解完成后,12000rpm,4℃,离心 10分钟,上清即为总蛋白溶液。

3. 贴壁细胞提取蛋白

倒掉培养基,沿细胞培养皿侧壁或者培养瓶瓶口慢慢加入 PBS 溶液,轻轻晃动平皿或者培养瓶,然后将细胞培养皿/瓶倾斜放置,用移液器(SPIP-1000)轻轻吸除残余液体,尽量轻柔,不要将细胞冲掉,清洗 2-3 次,最后一次将残余 PBS 完全吸干;

加入适当体积的完全裂解液(例如六孔板各单孔细胞长满的话,加入大约 250 μL完全裂解液),反复晃动细胞培养皿/瓶,让裂解液与细胞完全接触,用细胞刮刀(WG3010)将细胞刮下来,收集后,加入研磨珠,放入研磨仪中进行裂解;

裂解完成后,12000rpm,4℃,离心 10分钟,上清即为总蛋白溶液。



   

常见问题

RIPA裂解液在裂解过程中,溶液变得粘稠怎么办?

可能原因:

  1. 裂解液体积较少组织裂解不充分;

  2. 组织或细胞的基因组DNA释放出来变得粘稠。

解决办法:

  1. 可以多加RIPA裂解液并用移液器反复吹打至不粘稠;

  2. 加入全能核酸酶降解核酸。

 


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