规格 抗体纯化试剂盒（Protein A琼脂糖凝胶法） G2246-10T 10 T 产品简介 SweAgarose Protein A是用于分离和纯化单克隆抗体、多克隆抗体或Fc-融合蛋白的通用性亲和层析介质，具体性能见产品信息表2。Protein A是一种发现于金黄色葡萄球菌（Staphylococcus aureus）的细胞壁表面蛋白；Protein G是C型或G型链球菌（Streptococcal bacteria）表达的免疫球蛋白结合蛋白；Protein A和Protein G功能相似，能特异性地与哺乳动物免疫球蛋白（Immunoglobulin,Ig结合；本产品使用的是基因改造后的Protein A，不仅能维持其本身的Ig亲和特性，同时也去除了天然蛋白本身的非主要结合域以降低非特异性结合，以高度交联的琼脂糖凝胶为基质，修饰的耐碱重组Protein A为配基，具有很高的物理化学稳定性。 抗体纯化试剂盒（Protein A琼脂糖凝胶法）提供了5 mL SweAgarose Protein A 填料、重力柱、抗体纯化所需的缓冲液，方便客户使用，操作简单，纯化效率高。试剂盒组分见表 3 。 产品信息 指标名称 描述 产品内容 50%(v/v) 琼脂糖凝胶保存于特殊保存液中 凝胶类型 4%交联琼脂糖凝胶 偶联蛋白 耐碱重组Protein A 偶联蛋白分子量 ~25 kDa（Protein A） 结合载量 10-20 mg/mL 凝胶 特异性 来自不同物种的抗体，包括小鼠、人源、大鼠、山羊、绵羊、牛 粒径范围（μm） 30~150 μm 平均粒径（μm） 90 μm 化学稳定范围 常用的水相缓冲液；500 mM NaOH ；6 M盐酸胍； 8 M尿素；70% 乙醇 储存与运输 冰袋（wet ice）运输；5×蛋白上样缓冲液（无气味、还原型）请保存于-20℃，其他2-8℃保存，有效期12个月。 试剂盒 组成 货号 组成 规格 储存温度 G2206-5ML SweAgarose Protein A 5 mL 2-8℃ G2246-1 PBS, 10×（pH7.4） 100 mL 2-8℃ G2246-2 洗脱液（Acid Elution Buffer） 2×75 mL 2-8℃ G2246-3 中和液（Neulization Elution Buffer） 15 mL 2-8℃ G2075-1ML 5×SDS-PAGE蛋白上样缓冲液（无气味、还原型） 1 mL -20℃ G6064-12 亲和层析柱空柱（12 mL） 5套 常温 说明书 1份 操作 步骤 1. 纯化试剂准备 ： 抗体纯化相关试剂配方参考如下，用户可根据具体实验情况自行调整： 组分 组分配方 平衡/洗杂液（1×PBS） 1×PBS：137 mM NaCl，2.7 mM KCl, 10 mM Na 2 HPO 4 , 2.0 mM KH 2 PO 4 洗脱液（Acid Elution Buffer） 100 mM 甘氨酸, pH 2.8 中和液（Neulization Elution Buffer） 1.0 M Tris-HCl, pH 9.0 注意：纯化前先配制 1 × PBS 和 1×蛋白上样缓冲液 。 1 × PBS 的配制： 将10×PBS缓冲液用超纯水稀释至1×，即为1×PBS；例如1 mL 10×PBS缓冲液加入9 mL超纯水，混匀后即为1×PBS缓冲液； 1×蛋白上样缓冲液（ 无气味、 还原型）的配制： 取适量5×蛋白上样缓冲液（还原型）用超纯水稀释5倍即为1×蛋白上样缓冲液（还原型）；例如0.2 mL 5×蛋白上样缓冲液（还原型）加入0.8 mL超纯水，混匀后即为1×蛋白上样缓冲液（还原型）。 2. 层析重力柱组装及平衡处理： 重力柱组装： 详细方法可参考本公司亲和层析柱空柱（货号G6064-12）装柱流程。 筛板处理： 用纯水或者填料保存液预先对筛板进行脱气处理，将下筛板推至空柱底部后加入适量保存液浸润底部，封住下出液口； 装填： 将 SweAgarose Protein A 填料上下颠倒充分混匀后取适量加入层析柱(避免剧烈摇晃)，室温静置10 min，待凝胶与溶液分层后，打开底部出液口让乙醇通过重力作用缓慢流出，同时将上筛板垂直推至填料表面，添加保存液至满柱，装柱完成； 平衡： 向装填好的柱子中加入5 个柱体积的去离子水将乙醇冲洗干净后，再用5-8个柱体积的平衡液平衡柱子，平衡结束后即可上样。 注意： 柱体积指填料体积；建议装填高度不超过空柱高度 1/3；填料保护液占比约50%请根据填料载量及蛋白表达量选取合适地体积的乙醇和填料混合液。 3. 样品制备 3.1 上柱之前要确保样品溶液有合适的离子强度和pH值，可以用平衡液对血清样品、腹水或细胞培养液稀释，或者样品用平衡液透析。 3.2 上柱之前样品建议离心或用0.22 μm或0.45 μm滤膜过滤，减少杂质，提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。 4. 纯化流程 上样： 将处理好的样品直接加入平衡好的柱子中，以加入的体积控制流速快慢，收集流出液，用于SDS-PAGE分析蛋白质的结合情况； 淋洗： 使用2-5个柱体积的平衡液冲洗上样后的柱子，洗去部分杂蛋白； 洗杂： 使用10-15个柱体积的洗杂液冲洗柱子，分管收集洗杂液，用于SDS-PAGE分析蛋白质的洗杂程度，也可用考马斯亮蓝G250（#G2039）快速检测洗杂终点； 洗脱： 使用约3-5个柱体积的洗脱液（Acid Elution Buffer）冲洗柱子，分管按体积收集洗脱液并立即用1/10体积中和液（Neulization Elution Buffer）中和到抗体稳定的pH，SDS-PAGE分析每管蛋白质洗脱情况； 柱再生： 洗脱结束后，应立即用2~3个柱体积的洗脱缓冲液清洗介质，然后用2~3个柱体积的平衡液冲洗平衡。如工艺过程中的变性蛋白或脂质等物质，在再生过程中无法洗脱，可以通过在位清洗操作去除。 5. 在位清洗（CIP）： 介质经过长期使用后，过多的污染物会使柱床反压增大，从而降低柱效与介质吸附载量，甚至损害介质的寿命。定期CIP可有效保护介质。如果介质轻微污染，可每1-5次循环进行一次CIP；但对于实验后污染严重的介质，建议每次使用之后都进行在位清洗，以保证结果的可重复性。 对于强结合蛋白、沉淀、强疏水性蛋白及脂类物质去除： 可用2 M NaCl 清洗2个柱体积，去除较强的非特异性结合蛋白； 可用100-500 mM NaOH 清洗柱子，接触时间10~15 min，立即用纯水冲洗3-4个柱体积，再用平衡液冲洗5个柱体积； 可用6 M盐酸胍冲洗2-3个柱体积，立即用平衡液清洗至少5个柱体积。 注意事项 1. 试剂盒中组分SweAgarose Protein A请勿保存于-20℃或反复冻融，否则会影响凝胶的性能，造成不必要的实验误差。 2. 凝胶需维持pH为6-8，避免高速离心、干燥或冻存，否则可能会引起凝胶聚团。 3. 凝胶使用前要充分混匀，混匀操作须轻柔，不宜剧烈涡旋震荡等，避免抗体变性等。 4. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，...