服务介绍： 游离脂肪酸（Non-esterifiedfatty acids，NEFA）是中性脂肪分解后的产物之一。当肌肉活动所需能源——肝糖耗尽时，脂肪组织会分解中性脂肪成为游离脂肪酸来充当能源使用。所以，游离脂肪酸可被认为是进行持久活动所需的物质。 货号 名称 规格 价格（元） GM1142 游离脂肪酸NEFA 反应 20 实验结果展示： 实验流程（具体步骤以说明书为准） 1.样品准备 血清，血浆样本，透明液体状样本、组织，细胞等 2.检测前准备 处理样本，配制试剂 3.检测步骤 加样-加试剂-显色反应后酶标仪读数 4.实验结果 样本OD值代入公式计算出结果，以EXCEL形式发出 送样运输要求 1、血清样本（干冰运输） 全血标本加到促凝管（黄色管盖， QX0028 ）或者无菌无酶的EP管（ EP-150X-J ）中室温静置2小时后于2-8℃ 3000rpm/min离心15min，取上清放于-20℃或-80℃保存，避免反复冻融。样本量不低于5μL。 2、血浆样本（干冰运输） 全血样本置于肝素抗凝管内（绿色管盖， QX0012 ），采血量为抗凝管标注体积的80%-100%，血量勿超过抗凝管标注体积否则抗凝效果不佳，血量不少于80%标注体积，否则样本会被抗凝剂稀释。轻轻颠倒混匀，30分钟内于2-8℃ 3000rpm/min离心15min，取上清放于-20℃或-80℃保存，避免反复冻融。样本量不低于5μL。 3、动植物组织样本（干冰运输） ①动物处死后5min内取样，全程冰上操作，先取易降解的组织，如胰腺、肠、胃等，再取其它组织，组织块至少取50mg以上（黄豆大小）。组织取好后用预冷的PBS轻轻漂洗掉样本表面的血污，例如心、肝、脾、肾等血污较多的组织，可用预冷PBS清洗多次，直至血污清洗干净，用滤纸吸干组织表面液体，立即放入EP管或冻存管中-80℃保存。 ②肠，胃，血管，食管，子宫等标本，取材后立即把组织切开用预冷PBS清洗多次，去除内容物，用滤纸吸干组织表面液体，立即放入EP管或冻存管中-80℃保存。 ③刚孵化的斑马鱼离心后至少提供黄豆大小的数量。 ④视网膜需单独剥离，小鼠至少需要4个视网膜合并，大鼠至少需要2个视网膜合并。 ⑤皮肤样本需去净毛发。 ⑥根据实验目的选择植物的不同部位（如叶片、根、茎、种子等），尽量选择生长状态一致的样本。采集样本后，用湿布轻轻去除表面污垢，注意不要破坏细胞结构，用无菌吸水纸轻轻吸去水分，避免样本变质。 如有特殊特定部位请提供详细取材要求或参考图。 4、细胞样本（细胞量至少10 7 ，细胞沉淀黄豆大小）、细菌样本（干冰运输） 贴壁细胞： ①培养好的细胞弃培养基，加入PBS，用细胞刮沿一个方向轻轻刮下细胞，切记不要反复刮，避免细胞刮破。 ②细胞液收集至离心管内，4℃低速离心（不超过3000rpm）5min，去上清，收集细胞沉淀，细胞沉淀要有黄豆大小。 悬浮细胞： ①将细胞及培养基一起吸入离心管中，4℃低速离心（不超过3000rpm）5 min，去上清，收集细胞沉淀。 ②加入1mL PBS溶液重悬细胞，将细胞转移到1.5mL离心管中，4℃低速离心（不超过3000rpm）5min，去上清，收集细胞沉淀，细胞沉淀要有黄豆大小。 细胞上清：取细胞培养基于2-8℃，3000rpm离心15min取上清，于-20℃或-80℃保存，避免反复冻融。样本量不低于5μL。 细菌样本：将培养液4°C，3000rpm离心10分钟，去除上清液，保留菌体。用磷酸缓冲液（PBS）洗涤菌体2-3次，去除残留的培养基，收集沉淀，细菌沉淀黄豆大小。 备注： 1.不要寄送培养板或培养瓶，运输过程中细胞容易脱落且造成细胞活力下降，培养板有漏液风险，造成样本污染。 2.有单独需要加试剂处理细胞的指标检测，如ATP（ G4309 ），T-GSH/GSSG（ G4304 ），需要先进行细胞计数再收集沉淀，细胞数目备注在实验交接单上。 仅供科研用途，不可用于临床诊断！