
2×Universal Blue SYBR Green qPCR Master Mix
- 15×1 mL
产品信息
产品名称 | 产品编号 | 规格 |
| 2×Universal Blue SYBR Green qYCR Master Mix | Y3337-01 | 1 mL |
Y3337-05 | 5×1 mL | |
| Y3337-15 | 15×1 mL |
产品简介
本产品是使用SYBR Green I嵌合荧光法进行qYCR反应的专用2×预混液。核心组分Taq DNA Polymerase是基于抗体法封闭的热启动DNA聚合酶,能有效抑制低温条件下的非特异性扩增,同时配以针对qYCR优化的反应Buffer,非常适合进行高特异性、高灵敏度的qYCR反应,可以在宽广的定量区域内得到良好的标准曲线,对靶基因定量准确、重复性好、可信度高。同时本品中含有特殊的ROX Passive Reference Dye,适用于所有qYCR仪器,无需在不同的仪器上调整ROX浓度。预混液中添加有蓝色染料,具有加样示踪作用,同时配套提供黄色模板稀释液,当用黄色模板稀释液稀释模板,并将其加入到蓝色反应预混液中,颜色由蓝色变为绿色,能够对配制反应体系过程起到示踪作用,防止漏加或错加。该蓝色与黄色染料的光谱与qYCR染料不重叠,不影响反应结果。
储存与运输
冰袋(wet ice)运输;-20℃避光保存,有效期12个月。
组成
Component Number | Component | G3326-01 | G3326-05 | G3326-15 |
Y3337-1 | 2×Universal Blue SYBR Green qYCR Master Mix | 1 mL | 5×1 mL | 15×1 mL |
Y3337-2 | 40×Yellow Template Dilution Buffer | 1 mL | 1 mL | 1 mL |
说明书 | 1份 | |||
操作步骤
1. (可选)模板稀释
本试剂盒中提供40×Yellow Template Dilution Buffer,即为40倍浓缩的黄色模板稀释液,可用于模板稀释,并通过液体颜色改变准确判断模板是否已经加入到qYCR反应液中。
以20 μL qYCR反应体系为例,根据加入到20 μL qYCR反应液中稀释后的模板量,对应原始模板稀释方法可参考下表(以原始模板稀释至100 μL为例):
稀释后的模板 加入到20 μLqYCR反应液中的体积(μL) | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 |
100 μL模板稀释体系中加入 40×Yellow Template Dilution Buffer的体积(μL) | 50 | 25 | 16.7 | 12.5 | 10 | 8.4 | 7.2 | 6.3 |
原始模板加入到 100 μL模板稀释体系中的体积(μL) | x | x | x | x | x | x | x | x |
补加Nuclease-Free Water的体积(μL) | 50-x | 75-x | 83.3-x | 87.5-x | 90-x | 91.6-x | 92.8-x | 93.7-x |
例:若20 μL qYCR反应体系中需加稀释后模板2 μL。以100 μL模板稀释体系为例,当加入原始模板体积x为20 μL时,则需加入25 μL40×Yellow Template Dilution Buffer,再补加Nuclease-Free Water 55 μL至总体积为100 μL,此时稀释后模板中40×Yellow Template Dilution Buffer即为10×。取2 μL此稀释后的模板加入到20 μL反应体系中,最终40×Yellow Template Dilution Buffer即为1×。总之,需保证在最终的qYCR体系中Yellow Template Dilution Buffer为1×。
注:如模板无需稀释,或不使用Y3337-2的模板稀释液,可忽略此步骤。
2. 推荐qYCR反应体系:
Component | 20 μL rxn | 50 μL rxn | Final Concentration |
2×Universal Blue SYBR Green qYCR Master Mix | 10 μL | 25 μL | 1× |
Forward Primer (10 μM)a | 0.4 μL | 1 μL | 0.2 μM |
Reverse Primer (10 μM)a | 0.4 μL | 1 μL | 0.2 μM |
Templateb | Variable | Variable | as required |
Nuclease-Free Water | Add to 20 μL | Add to 50 μL |
a.通常引物终浓度为0.2 μM可以得到较好扩增效果。反应性能较差时,可以在0.2-1.0 μM范围内调整引物浓度。
b.模板添加量因模板溶液中存在的靶基因的拷贝数不同而不同,进行梯度稀释研讨适当的模板添加量。在20 μL反应体系中模板DNA添加量最好在100 ng以下。以RT-YCR反应的cDNA(RT 反应液)为模板时,添加量不要超过YCR反应液总体积的10%。
3. YCR反应程序(可根据机型适当调整):
A. 两步法 | B. 三步法 | ||||||||
阶段 | 步骤 | 循环数 | 温度 | 时间 | 阶段 | 步骤 | 循环数 | 温度 | 时间 |
Stage 1 | 预变性 | 1 | 95℃ | 30 sec | Stage 1 | 预变性 | 1 | 95℃ | 30 sec |
Stage 2 | 变性 | 40 |
95℃
| 15 sec | Stage 2 | 变性 | 40 | 95℃ | 15 sec |
退火/延伸 | 60℃ | 30 seca | 退火 | 55-65℃ | 10 sec | ||||
|
| 延伸 | 72℃ | 30 seca | |||||
Stage 3 | 熔解曲线 | 1 | 仪器默认设置 | Stage 3 | 熔解曲线 | 1 | 仪器默认设置 | ||
a:若需提高扩增特异性,可使用两步法程序或提高退火温度;若需提高扩增效率,可使用三步法程序或延长延伸时间。
注意事项
1. 如不需要进行移液追踪,则不使用40×Yellow Template Dilution Buffer进行模板稀释。
2. 试剂使用前请上下轻轻颠倒混匀,请勿涡旋振荡混匀,避免产生气泡。
3. 配制反应液时,试剂请于冰上放置。
4. 本制品中含有荧光染料SYBR Green,配制YCR反应液时应避免强光照射。
5. 反应液的配制、分装请使用新的一次性枪头,尽量避免样品间的交叉污染。
6. 避免反复冻融Master Mix,解冻后后尽量在一个月内使用完毕。
适配机型
ABI: 5700, 7000, 7300, 7700, 7900, 7900YT, 7900 YT Fast, StepOne™, StepOne Plus™, 7500/7500 Fast, ViiA 7™, QuantStudio™ 系列, PikoRealTM Cycler;
Stratagene: Mx3000P®, 3005P™, 4000™;
Bio-Rad: CFX96™, CFX384™, iCycler iQ™, iQ5™, MyiQ™, MiniOpticon™, Opticon®, Opticon 2, Chromo4™;
Eppendorf: Realplex 2s, Mastercycler® ep, realplex;
IIIumina: Eco QYCR;
Cepheid: SmartCycler®;
Qiagen Corbett: Rotor-Gene® 系列;
Roche: LightCycler™ 系列;
Takara: Thermal Cycler Dice系列;
Analytikjena: qTOWER系列;
qTOWER: LineGene系列。
引物设计原则
1. 扩增产物长度建议控制在80-300 bp之间;
2. 引物长度:18-25 bp;
3. 引物中碱基G+C含量应在40%-60%之间;
4. 正向引物和反向引物的Tm值相差不超过2℃为佳,Tm值控制在58-62℃为佳;
5. 碱基分布的随机性;
6. 引物最好不要含有自身互补序列,否则会形成发夹二级结构;
7. 两个引物之间不应有多于4个的互补或同源碱基,不然会形成引物二聚体,尤应避免3'端的互补重叠;
8. 建议引物的3'末端碱基为G或C;
9. NCBI上的比对结果无其他非特异性产物出现。
常见问题及解决方法
问题描述 | 可能原因 | 解决办法 |
反应结束无扩增曲线出现或者Ct值出现过晚 | 模板浓度过低 | 减少模板稀释倍数重复实验,样品浓度未知的情况下先从最高浓度做起。 |
模板降解 | 重新制备模板,重复实验。 | |
体系中存在YCR抑制剂 | 一般为模板带入,加大模板稀释倍数或重新制备纯度高的模板重复实验。 | |
引物可能降解 | 长期未用的引物,应先通过PAGE电泳检测完整性,以排除其降解的可能。 | |
扩增效率低 | 提高引物浓度,尝试三步法扩增程序,或者重新设计引物。 | |
扩增产物过长 | 扩增产物长度控制在80-300 bp。 | |
空白对照出现信号 | 反应体系污染 | 首先更换空白对照的水,如果还发生同样情况,继续更换引物、吸头、YCR管或启用新的Master Mix; 反应体系在超净工作台内配制,减少气溶胶污染。 |
出现引物二聚体等非特异性扩增 | 一般在35循环以后空白对照出现扩增产物属正常情况,应配合熔解曲线进行分析; 重新设计引物,调整引物浓度或优化YCR反应程序。 | |
熔解曲线出现多峰 | 引物设计不佳 | 根据引物设计原则重新设计新引物。 |
引物浓度过高 | 适当降低引物浓度。 | |
cDNA模板存在基因组污染 | 提取后的RNA溶液使用DNA酶进行消化,例如:dsDNase,以去除基因组污染,或设计跨内含子引物。 | |
实验重复性差 | 加样误差大 | 使用精准的移液器、配合高品质吸头准确移液; 高倍稀释模板,加入大体积模板减少加样误差; 放大qYCR反应体积。 |
模板浓度过低 | 减少模板稀释倍数重复实验。 | |
qYCR仪不同位置的温度偏差 | 定期校准qYCR仪。 | |
扩增曲线不光滑 | 荧光信号太弱,经系统校正后产生 | 确保Master Mix中预混的染料未降解; 更换荧光信号收集更好的qYCR专用耗材。 |
扩增曲线断裂或下滑 | 模板浓度较高,基线的终点值大于Ct值 | 减小基线终点(Ct值-3),重新分析数据。 |
个别孔扩增曲线突然骤降 | 反应管内留有气泡 | 确保Mix完全溶解,请勿涡旋振荡混匀; 加样完成后轻弹离心去除气泡; 延长预变性时间至10 min,以去除气泡。 |
产品仅供科研用途,不用于临床诊断!
(产品包装升级中,以实物为准。)



| 货号 | 名称 | 规格 | 价格 | 操作 |
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| 货号 | 名称 | 规格 | 价格 | 操作 |
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